WB实验（蛋白免疫印迹实验），是一项通过凝胶电泳按照分子量大小分离蛋白，然后再利用特异性抗体识别这些蛋白的技术，它是对蛋白进行定性和相对定量的重要检测方法。
尽管绝大多数研究僧在接触该实验时都会被虐的体无完肤，却也在和WB斗志斗勇的过程中积累了不少经验。正所谓前人种树，后人乘凉，现在中索莱宝就把前辈做WB实验的经验总结起来，希望对大家能有所帮助。
一、关于蛋白提取：
1、裂解buffer：每种裂解buffer都有其擅长的用途，除了这些裂解buffer以外，为了防止蛋白降解、去磷酸化，各种蛋白酶抑制剂、磷酸酶抑制剂都是必须的；在提取蛋白的时候仅仅靠裂解液有时候也不能达到完全抽提的效果，有条件的话，可以对抽提悬液进行10-20s的超声破碎处理。
此外如果没有裂解buffer，可以用1×SDSloadingbuffer代替来抽提蛋白，其效果类似于SDS裂解液，不过抽提后的样本不能进行浓度测定。
2、干扰蛋白：培养细胞、动物组织都存在血清成分，血清中存在大量的白蛋白与免疫球蛋白，这些蛋白会经常性的出现杂带干扰，一般白蛋白杂带在70kDa处，免疫球蛋白杂带出现在50kDa处。
建议广大战友在提取细胞蛋白的时候，一定要使用PBS漂洗细胞至少3次，去除残留的培养基成分；提取组织的时候，尽量去除组织中血液的残留，这样样本中的干扰因素才会减少到zui低。
二、关于胶浓度及电泳条件的选择
正确选择凝胶浓度与电泳条件能够让目的蛋白区域分离开，从而使条带的位置，杂带位置等一些因素的影响降到zui低。
三、关于转膜的条件与注意事项
1、转膜条件：
对于分子量10-15kDa的指标转膜时间不宜过长，100V、冰浴45min足矣；对于分子量指标150kDa以上的指标，100V、冰浴2h也足够了；其他介于15-150kDa之间的指标100V、冰浴1h完全可以保证效果。
2、转膜操作：
准备PVDF膜的大小要与切割后的凝胶大小一致或略小，滤纸和海绵大小也要一致；制作“三明治”不能太厚也不能太薄，太厚容易使胶变形，条带弯曲，太薄气泡容易进入，导致条带不完整，这些都可以用增加减少滤纸量来改善。
一定要把目的蛋白分子量区域贴在膜的中间部位；分清楚正j与负j，避免反方向转印；转印缓冲液要提前预冷，整个转印过程也需要在冰浴中进行。
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